Sofia Lora Cortes

Soy microbióloga egresada de la Universidad de Los Andes con actitud perseverante y productiva. Me caracterizo por mi autentica personalidad, curiosidad inquieta y aprendizaje continuo. Tengo experiencia en microbiólogía clinica, microbiología farmacéutica, microbiología cosmética, biología molecular y desarrollo de proyectos de investigación. Manejo tanto Buenas Prácticas de Laboratorio como Buenas Prácticas de Manufactura. He realizado en la industria farmaceutica y cosmética el análisis de productos estériles y no estériles, validaciones, aptitudes, pruebas de promoción y crecimiento de medios de cultivo, manejo de ceparios y demás. Igualmente, he participado en proyectos de investigación que ayudan a la aplicación de microorganismos para la restauración de suelos contaminados por hidrocarburos en fincas cafeteras. Creo en la innovación, en el desarrollo personal contínuo, creo en cuestionar lo establecido, en trabajar con propósito y en rodearme de personas que no solo buscan resultados, sino sentido.

Investigadora de Genética Humana

Universidad de Los Andes. Junio, 2023 - Febrero, 2024

• Identificación de regiones específicas y rutas metabólicas de mutación de la PSEN1, usando EMBL-EBI como herramienta bioinformática principal para la base de datos de la proteina.
• Procesamiento de 23 muestras de pacientes para la detección de Alzheimer Familiar en colaboración con AFACOL, realizando el diseño de cebadores específicos para la amplificación del gen PSEN1 utilizando Primer-BLAST.
• Análisis de variantes patogénicas en la Hemofilia A, enfocandonos específicamente en el SNP rs2228152 ubicado en el gen F8, exón 12. Se encontró una variación de Arginina en vez de Treonina. Según la interpretación del ClinVar, se logró identificar como una variante patogénica , sin embargo no se evidenció criterior de informomación que lo relacionen directamente con la enfermedad.

Practicante investigadora en Restauración Ambiental

Corpogen. Enero, 2024 - Junio, 2024

• Recuperación de microorganismos a partir de 126 muestras de suelo contaminado con glifosato, provenientes de 4 fincas cafeteras, utilizando kits DNeasy PowerSoil Pro para la extracción de ADN.
• Evaluación de concentración y pureza de ADN con NanoDrop: 100% de muestras con extracción exitosa; fincas 3 y 4 mostraron valores óptimos de A260/280.
• Todas las muestras presentaron valores anormales en A260/230, indicando contaminación por fenoles y sales, atribuida al glifosato.
• Aislamiento de bacterias resistentes a concentraciones de hasta 4% de glifosato en medios de cultivo.
• Secuenciación de amplicones identificó bacterias del género Stenotrophomonas sp., con capacidad de degradar glifosato (>98% en 72 h a altas concentraciones).
• Preparación de medios de cultivo como YPD agar, Czapek Dox, M9, y Tween 80, considerando concentración y volumen específicos.
• Manejo de QIIME2 para análisis de microbioma humano en muestras de dos personas, en cuatro zonas del cuerpo, basadas en el estudio de Caporaso et al. (2011).
• Análisis de datos secuenciados en Illumina HiSeq (16S rRNA región V4), utilizando herramientas de Linux para control de calidad, filtrado, denoising, asignación taxonómica y análisis de diversidad microbiana.

Analista de microbiología

Laboratorios DEMAC. Diciembre, 2024 - Actualidad.

• Análisis de productos estériles siguiendo el capítulo <71> de la USP: Pruebas de Esterilidad; y análisis de productos no estériles incluyendo estabilidades, siguiendo los capítulos <61>, <62> y <1111> del mismo. Un tiempo estimado de 4.5 minutos de análisis por muestra.
• Lectura de recuento microbiológico tanto de mesófilos como de hongos y levaduras, al igual que la identificación macroscópica y microscópica de microorganismos recuperados en medios específicos. Aplicaciones de pruebas bioquímicas para la identificación presuntiva de los mismos utilizando kits como Enterosystem 18R y Oxi/Ferm Pluri Test o identificación de poducción de catalasa o enzima citocromo c oxidasa acompañado de identificación microscópica por medio de tinción Gram para bacterias gram + o gram -, o tinción con Azúl de Bromoticol para la identificación de Hongos hilinos o demateaceos.
• Análisis microbiológico de los distintos tipos de aguas: Agua purificada, Agua Potable y Agua para Inyección (WFI) por método de filtración de membranas o siembra por profundidad.
• Pruebas de Promoción y Crecimiento junto con manejo de cepario para medios no específicos como Tryptic Soy Agar o Agar Sabouraud; y medios selectivos como Agar Manitol Salado, Medio BCSA, y demás.
• Valoraciones para determinar la concentración de un ingrediente activo en un medicamento, específicamente para Gentamicina, Neomicina y Nistatina en sus diferentes presentaciones. Adicionalmente, se realiza el aseguramiento de parámetros como especificidad, precisión, linealidad y robustez del método.
• Aptitudes de productos estériles y no estériles. Para productos no esteriles se usan medios selectivos para la recuperación mircroorganismos específicos inoculados junto con el producto, tales como Agar McConkey para E. coli, Agar Manitol Salado para S. aureus, Agar Cetrmide para P. aeuroginosa y demás dependiendo del producto. Para productos estériles se usan caldos Tryptic Soy Broth de esterilidad para el crecimiento de bacterias aerobias y hongos (B.spizizenii, A. brasiliensis y C. albicans) y caldio Tioglicolato para la recuperación de microorganismos aerobios y anaerobios (C. sporogenes, P. aeruginosa y S.aureus), junto a la elaboración de protocolos de los mismos.
• Monitoreos microbiológicos de ambientes, superficies y personal para las empresas Qualisystem S.A.S (Bogotá D.C.), Demac Csométicos (Mosquera, Cundinamarca) y Demac Farmaceutica (Bogotá D.C.)

Microbiología. Universidad de Los Andes. Enero, 2020 - Octubre, 2024.

Curso en Microbiología Farmacéutica y Cosmética. Universidad de Los Andes. Noviembre, 2022.